Near-Infrared Untargeted Metabolomics with Unsupervised and Supervised Multivariate Statistical Analysis of Fatty Acid Profiles in Cheeses

Authors

DOI:

https://doi.org/10.29356/jmcs.v69i3.2212

Keywords:

Near infrared spectroscopy, NIR based metabolomics, cheeses, untargeted metabolomics, saturated, fatty acid (SFA)

Abstract

Abstract. The present work describes a workflow for unsupervised Principal Component (PCA) and supervised Partial Least Squares Discriminant (PLS-DA) multivariate statistical analysis (MSA), to analyze Near Infrared (NIR) data matrixes of cheeses from diverse types and geographical origins, with respect to their NIR saturated fatty acid profile. The data set include (A) acquired NIR absorbance spectra, (B) post-processed first derivative NIR spans and (C) post-processed first derivative frequency-selected NIR spans, within a wavelength range of 12500-3600 cm-1. NIR data inputs were adapted for the first time into a format suitable for the stream-lined metabolomics data analysis “MetaboAnalyst”, by converting spectrophotometer raw data format, into a JCAMP-DX IUPAC standard format family for spectral data exchange, in turn transformed into an editable comma-separated values (.csv) format, suitable for metabolomics studies with MetaboAnalyst. The discriminant regions for the first NIR data matrix were five. For the second matrix, discriminant wave-number regions were reduced to three: 10000 to 8000 cm-1 (-CH- overtone), 6000 to 5000 cm-1(-C=O- overtone) and 5000 to 4000 cm-1 (-CH- band). Finally, for the third NIR matrix, refined discriminant regions were taken: 9700 to 8265 (-CH- overtone), 6661 to 4655 cm-1 (-C=O- overtone) and from 4327 to 4000 cm-1 (-CH- band). The PLS-DA model obtained from the first derivative frequency-selected near-infrared spans data matrix showed the best score-plot classification between dairy samples and saturated fatty acid standards. Present results intend to introduce an approach for untargeted and qualitative NIR based metabolomics within a platform with more than 300,000 users to date.

 

Resumen. El presente describe un flujo de trabajo para realizar análisis estadísticos multivariados (MSA) no supervisados por análisis del componente principal (PCA) y supervisados por análisis discriminante por mínimos cuadrados parciales (PLS-DA), para analizar matrices de datos obtenidos por infrarrojo cercano (NIR) de quesos de diversos tipos y orígenes geográficos, con respecto a sus perfiles NIR de ácidos grasos saturados. El conjunto de datos incluye (A) espectros NIR adquiridos en modo absorbancia, (B) espectros NIR post-procesados por primera derivada y (C) espectros NIR post-procesados por primera derivada y con frecuencias seleccionadas, dentro de un intervalo de longitud de onda entre 12500-3600 cm-1. La entrada de datos NIR fue adaptada por primera vez a un formato legible a la plataforma por internet de análisis metabolómicos “MetaboAnalyst”, convirtiendo el formato de datos espectrofotométricos sin procesar, al formato IUPAC JCAMP-DX estandarizado para intercambio de datos espectrales, transformados posteriormente hacia un formato de valores separados por comas editable (.csv) apropiado para estudios metabolómicos con MetaboAnalyst. Las regiones discriminantes para la primera matriz de datos NIR son cinco. Para la segunda matriz, las regiones de número de onda discriminantes se reducen a tres: 10000 a 8000 cm-1 (sobretono -CH-), 6000 a 5000 cm-1 (sobretono -C=O-) y 5000 a 4000 cm-1 (banda -CH-). Finalmente, para la tercer matriz NIR, se tomaron regiones discriminantes refinadas: 9700 a 8265 (sobretono -CH-), 6661 a 4655 cm-1 (sobretono -C=O-) y de 4327 a 4000 cm-1 (banda -CH-). El modelo PLS-DA obtenido de la matriz de datos de barrido de infrarrojo cercano post-procesados por primera derivada y con frecuencias seleccionadas muestra la mejor clasificación entre los lácteos y los estándares de ácidos grasos saturados. Estos resultados pretenden introducir un método para realizar metabolómica basada en NIR no dirigida y cuantitativa dentro de una plataforma con más de 300000 usuarios al momento.

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Author Biographies

Blanca Nayelli Ocampo-Morales, Universidad Autónoma Chapingo

Departamento de Ingeniería Agroindustrial

Arturo Hernández-Montes, Universidad Autónoma Chapingo

Departamento de Ingeniería Agroindustrial

Jose Enrique Herbert-Pucheta, Instituto Politecnico Nacional

Departamento de Química Orgánica, Escuela Nacional de Ciencias Biologicas

References

Cubero-Leon, E.; Peñalver, R.; Maquet, A. Food Res. Int. 2014, 60, 95–107. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodres.2013.11.041

Marshall, D. D.; Powers, R.; Prog. Nucl. Magn. Reson. Spectrosc. 2017, 100, 1–16. DOI: https://doi.org/10.1016/j.pnmrs.2017.01.001

Beleggia, R.; Platani, C.; Papa, R.; Di Chio, A.; Barros, E.; Mashaba, C.; Wirth, J.; Fammartino, A.; Sautter, C.; Conner, S.; Rauscher, J.; Stewart, D.; Cattivelli, L.; J. Agric. Food Chem. 2011, 59, 9366–9377. DOI: https://doi.org/10.1021/jf2022836

Herbert-Pucheta, J. E.; Lozada-Ramírez, J. D.; Ortega-Regules, A. E.; Hernández, L. R.; Anaya de Parrodi, C.; Molecules. 2021, 26, 4146. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules26144146

Saccenti, E.; Hoefsloot, H. C. J.; Smilde, A. K.; Westerhuis, J. A.; Hendriks, M. M.; Metabolomics 2014, 10, 361–374. DOI: https://doi.org/10.1007/s11306-013-0598-6

Kalivodová, A.; Hron, K.; Filzmoser, P.; Najdekr, L.; Janečková, H.; Adam, T.; J. Chemom. 2015, 29, 21–28. DOI: https://doi.org/10.1002/cem.2657

Gautam, R.; Vanga, S.; Ariese, F.; Umapathy, S.; EPJ Tech. Instrum. 2015, 2, 1–38. DOI: https://doi.org/10.1140/epjti/s40485-015-0018-6

Chong, J.; Wishart, D. S.; Xia, J.; Curr. Protoc. Bioinforma. 2019, 68, e86. DOI: https://doi.org/10.1002/cpbi.86

Worley, B.; Powers, R.; Curr. Metabolomics. 2013, 1, 92–107. DOI: https://doi.org/10.2174/2213235X11301010092

Pérez-Enciso, M.; Tenenhaus, M.; Hum. Genet. 2003, 112, 581–592.

Rodriguez-Otero, J. L.; Hermida, M.; Centeno, J.; J. Agric. Food Chem. 1997, 45, 2815–2819. DOI: https://doi.org/10.1021/jf960744p

De Marchi, M.; Penasa, M.; Zidi, A.; Manuelian, C.L.; J. Dairy Sci. 2018, 101, 10589-10604. DOI: https://doi.org/10.3168/jds.2018-15202

Downey, G.; Sheehan, E.; Delahunty, C.; O’Callaghan, D.; Guinee, T.; Howard, V.; Int. Dairy J. 2005, 15, 701–709. DOI: https://doi.org/10.1016/j.idairyj.2004.06.013

Manuelian, C. L.; Currò, S.; Penasa, M.; Cassandro, M.; De Marchi, M.; Int. Dairy J. 2017, 71, 107–113. DOI: https://doi.org/10.1016/j.idairyj.2017.03.011

González-Martín, M. I.; Severiano-Pérez, P.; Revilla, I.; Vivar-Quintana, A. M.; Hernández-Hierro, J. M.; González-Pérez, C.; Lobos-Ortega, I. A.; Food Chem. 2011, 127, 256–263. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2010.12.105

González-Martín, M. I.; Vivar-Quintana, A. M.; Revilla, I.; Salvador-Esteban, J. T.; Microchem. J. 2020, 156, 104854. DOI: https://doi.org/10.1016/j.microc.2020.104854

Szumacher-Strabel, M.; Cieślak, A.; Zmora, P.; Pers-Kamczyc, E.; Bielińska, S.; Stanisz, M.; Wójtowski, J.; J. Sci. Food Agric. 2011, 91, 2031–2037. DOI: https://doi.org/10.1002/jsfa.4415

Markiewicz-Kęszycka, M.; Czyżak-Runowska, G.; Lipińska, P.; Wójtowski, J.; J. Vet. Res. 2013, 57, 135–139. DOI: https://doi.org/10.2478/bvip-2013-0026

González-Martín, I.; Hernández-Hierro, J. M.; Salvador-Esteban, J.; González-Pérez, C.; Revilla, I.; Vivar-Quintana, A.; J. Sci. Food Agric. 2011, 91 (6), 1064–1069. DOI: https://doi.org/10.1002/jsfa.4283

Collomb, M.; Bisig, W.; Bütikofer, U.; Sieber, R.; Bregy, M.; Etter, L.; Dairy Sci. Technol. 2008, 88, 631–647. DOI: https://doi.org/10.1051/dst:2008029

Hewavitharana, G. G.; Perera, D. N.; Navaratne, S. B.; Wickramasinghe, I.; Arab. J. Chem. 2020, 13, 6865–6875. DOI: https://doi.org/10.1016/j.arabjc.2020.06.039

Amores, G.; Virto, M.; Separations 2019, 6, 14. DOI: https://doi.org/10.3390/separations6010014

Lobos-Ortega, I.; Hernández-Jiménez, M.; González-Martín, M. I.; Hernández-Hierro, J. M.; Revilla, I.; Vivar-Quintana, A. M.; Food Anal. Methods 2021, 14, 933–943. DOI: https://doi.org/10.1007/s12161-020-01928-8

Madalozzo, E. S.; Sauer, E.; Nagata, N.; J. Food Sci. Technol. 2015, 52, 1649–1655. DOI: https://doi.org/10.1007/s13197-013-1147-z

Shenk, J. S.; Westerhaus, M. O.; Crop Sci. 1991, 31, cropsci1991.0011183X003100060064x. DOI: https://doi.org/10.2135/cropsci1991.0011183X003100060064x

Šašić, S.; Ozaki, Y.; Appl. Spectrosc. 2000, 54, 1327–1338. DOI: https://doi.org/10.1366/0003702001951002

Osborne, B. G.; Fearn, T.; Hindle, P. H., in: Practical NIR Spectroscopy with Applications in Food and Beverage Analysis; Longman Scientific & Technical, 1993.

Garrido-Varo, A.; Carrete, R.; Fernández-Cabanás, V.; J. Infrared Spectrosc. 1998, 6, 89–95. DOI: https://doi.org/10.1255/jnirs.125

Hourant, P.; Baeten, V.; Morales, M. T.; Meurens, M.; Aparicio, R.; Appl. Spectrosc. 2000, 54, 1168–1174. DOI: https://doi.org/10.1366/0003702001950733

Subramanian, A.; Prabhakar, V.; Rodriguez-Saona, L. Encycl. Dairy Sci. 2011, 115–124. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-374407-4.00011-X

Ayvaz, H.; Mortas, M.; Dogan, M. A.; Atan, M.; Yildiz Tiryaki, G.; Karagul Yuceer, Y.; J. Food Sci. Technol. 2021, 58, 3981–3992. DOI: https://doi.org/10.1007/s13197-020-04861-0

Curto, B.; Moreno, V.; García-Esteban, J. A.; Blanco, F. J.; González, I.; Vivar, A.; Revilla, I.; Sensors 2020, 20, 3566. DOI: https://doi.org/10.3390/s20123566

Bittante, G.; Patel, N.; Cecchinato, A.; Berzaghi, P.; J. Dairy Sci. 2022, 105, 1817–1836. DOI: https://doi.org/10.3168/jds.2021-20640

Bou-Orm, N.; AlRomaithi, A. A.; Elrmeithi, M.; Ali, F. M.; Nazzal, Y.; Howari, F. M.; Al Aydaroos, F.; Planet. Space Sci. 2020, 188, 104957. DOI: https://doi.org/10.1016/j.pss.2020.104957

Zhao, X.; Song, Y.; Zhang, Y.; Cai, G.; Xue, G.; Liu, Y.; Chen, K.; Zhang, F.; Wang, K.; Zhang, M.; Gao, Y.; Sun, D.; Wang, X.; Li, J.; Molecules 2023, 28 (2), 666. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules28020666

Pereira, C. G.; Leite, A. I. N.; Andrade, J.; Bell, M. J. V.; Anjos, V.; LWT 2019, 107, 1–8. DOI: https://doi.org/10.1016/j.lwt.2019.02.072

Sørensen, K. M.; van den Berg, F.; Engelsen, S. B. NIR Data Exploration and Regression by Chemometrics—A Primer. In Near-Infrared Spectroscopy: Theory, Spectral Analysis, Instrumentation, and Applications; Ozaki, Y., Huck, C., Tsuchikawa, S., Engelsen, S. B., Eds.; Springer: Singapore, 2021; 127–189. DOI: https://doi.org/10.1007/978-981-15-8648-4_7

Ikehata, A. NIR Optics and Measurement Methods. In Near-Infrared Spectroscopy: Theory, Spectral Analysis, Instrumentation, and Applications; Ozaki, Y., Huck, C., Tsuchikawa, S., Engelsen, S. B., Eds.; Springer: Singapore, 2021; 211–233. DOI: https://doi.org/10.1007/978-981-15-8648-4_9

Lucas, A.; Andueza, D.; Ferlay, A.; Int. Dairy J. 2008, 18, 595–604. DOI: https://doi.org/10.1016/j.idairyj.2007.12.001

Soto-Barajas, M. C.; González-Martín, M. I.; Salvador-Esteban, J.; Hernández-Hierro, J. M.; Moreno-Rodilla, V.; Vivar-Quintana, A. M.; Revilla, I.; Ortega, I. L.; Morón-Sancho, R.; Curto-Diego, B.; Talanta. 2013, 116, 50–55. DOI: https://doi.org/10.1016/j.talanta.2013.04.043

Mishra, P.; Roger, J. M.; Rutledge, D. N.; Woltering, E.; Postharvest Biol. Technol. 2020, 168, 111271. DOI: https://doi.org/10.1016/j.postharvbio.2020.111271

Manuelian, C. L.; Currò, S.; Visentin, G.; Penasa, M.; Cassandro, M.; Dellea, C.; Bernardi, M.; De Marchi, M. T.; J. Dairy Sci. 2017, 100, 6084–6089. DOI: https://doi.org/10.3168/jds.2017-12634

Núñez-Sánchez, N.; Martínez-Marín, A. L.; Polvillo, O.; Fernández-Cabanás, V. M.; Carrizosa, J.; Urrutia, B.; Serradilla, J. M.; Food Chem. 2016, 190, 244–252. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2015.05.083

Zhong, L.; Huang, R.; Gao, L.; Yue, J.; Zhao, B.; Nie, L.; Li, L.; Wu, A.; Zhang, K.; Meng, Z.; Cao, G.; Zhang, H.; Zang, H.; Molecules. 2023, 28, 5672. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules28155672

Ozaki, Y.; Morita, S.; Morisawa, Y. Spectral Analysis in the NIR Spectroscopy. In Near-Infrared Spectroscopy: Theory, Spectral Analysis, Instrumentation, and Applications; Ozaki, Y., Huck, C., Tsuchikawa, S., Engelsen, S. B., Eds.; Springer: Singapore, 2021; 63–82. DOI: https://doi.org/10.1007/978-981-15-8648-4_4

Silva, L. K. R.; Jesus, J. C.; Onelli, R. R. V.; Conceição, D. G.; Santos, L. S.; Ferrão, S. P. B.; Int. J. Dairy Technol. 2021, 74, 393–403. DOI: https://doi.org/10.1111/1471-0307.12767

Oyedele, O. F.; J. Appl. Stat. 2021, 48, 1816–1832. DOI: https://doi.org/10.1080/02664763.2020.1779192

Llano Suárez, P.; Soldado, A.; González-Arrojo, A.; Vicente, F.; de la Roza-Delgado, B.; J. Food Compos. Anal. 2018, 70, 1–8. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jfca.2018.03.003

Khattab, A. R.; Guirguis, H. A.; Tawfik, S. M.; Farag, M. A.; Trends Food Sci. Technol. 2019, 88, 343–360. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tifs.2019.03.009

Ianni, A.; Bennato, F.; Martino, C.; Grotta, L.; Martino, G. V.; Molecules 2020, 25, 461. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules25030461

Broadhurst, D.; Goodacre, R.; Reinke, S. N.; Kuligowski, J.; Wilson, I. D.; Lewis, M. R.; Dunn, W. B.; Metabolomics 2018, 14, 72. DOI: https://doi.org/10.1007/s11306-018-1367-3

Dudzik, D.; Barbas-Bernardos, C.; García, A.; Barbas, C.; J. Pharm. Biomed. Anal. 2018, 147, 149–173. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jpba.2017.07.044

Grassi, S.; Tarapoulouzi, M.; D’Alessandro, A.; Agriopoulou, S.; Strani, L.; Varzakas, T. H.; Foods 2022, 12, 139. DOI: https://doi.org/10.3390/foods12010139

Szterk, A.; Ofiara, K.; Strus, B.; Abdullaev, I.; Ferenc, K.; Sady, M.; Flis, S.; Gajewski, Z. C.; Foods 2022, 11, 1116. DOI: https://doi.org/10.3390/foods11081116

Oliva-Cruz, M.; Mori-Culqui, P. L.; Caetano, A. C.; Goñas, M.; Vilca-Valqui, N. C.; Chavez, S. G.; Front. Nutr. 2021, 8, 677000. DOI: https://doi.org/10.3389/fnut.2021.677000

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2025-06-11

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